박테리아 운동성의 결정. 미생물 세포 파생물
10. 박테리아의 운동성, 이동성을 검출하는 방법.
편모를 형성하는 박테리아아내. 따라서 박테리아의 이동성은 존재 여부로 판단할 수 있습니다.
편모.
이동성을 감지하는 방법:
1. Leffler에 따른 편모의 염색.
2. 온전한 배양 연구:
a) "분쇄된 방울" 방법 - 매일 배양된 박테리아 한 방울을 유리 슬라이드 중앙에 바르고 유리 슬라이드로 조심스럽게 덮어 액체가 가장자리 밖으로 퍼지지 않고 기포가 들어가지 않도록 합니다. .
b) "매다는 드롭" 방법: 커버 유리 중앙에 박테리아 한 방울을 바르고 그 위에 오목한 부분에 바셀린을 바른 특수 유리 슬라이드를 놓아 방울이 웰 중앙에 오도록 한 다음 준비가 조심스럽게 뒤집어졌습니다.
11. 미생물 분류의 원리. 미생물의 체계적인 위치. 분류학적 범주. 유형의 개념 및 기준.
분류유기 세계에서 생명체의 위치를 확립하고 미생물의 분류, 명명법 및 식별에 대한 원리, 방법, 규칙을 개발합니다.
1) 단일계통 원리 - 모든 생물은 하나의 조상으로부터 유래한다.
2) 유전 원리 - 유전 수준과 그 계층 구조에서 유기체 간의 연결 설정, 그룹으로의 분할, 그들 사이의 연결.
분류학적 접근법: 유전자 체계학, 화학체계학, 표현체계학 등
명명법 MB 간의 종속 및 통신을 설정합니다.
유기농 세계는 다음과 같이 나뉩니다.: 초왕국, 왕국, 종류, 계급, 목, 가족, 속, 종,
종까지의 모든 분류군은 하나의 단어로 정의되며 종은 이진 이름입니다(첫 번째 단어는 일반 이름입니다).
이름, 두 번째 - 특정), 아종 3개의 가문비나무(속, 종, 아종의 이름).
실제로는 종(種), 즉 자유롭게 교배하는 개체군의 집합만이 존재합니다.
공통 유전자 풀, 생태적 통일성, 생식적 고립을 지닌 하나의 조상.
유형 기준:
a) 형태학적; b) 영토적 특성(채색 능력) c) 생화학, d)
혈청학적(항원 구조); e) 생물학적; f) 환경, g) 지리적
미생물 분류:
I. 압도적인 원핵생물
1 박테리아 왕국
1.1. 스코토박터 유형
1.1.1. 클래스 박테리아
1.1.1.1. 진정한 박테리아를 주문하세요
1.1 1.2 스피로헤타 주문
1.1.1.3 극균목(Acginomycetes) 주문
1.1.2. 리세티 수업
1.1.2.1. 리치케티의 주문
1.1.2.2. 클라미디아 주문
1.1.3. 클래스 몰리큐트
1.1.3.1. 마이코플라스마 주문
II. 진핵생물의 우월화
III. 바이러스의 왕국
1. 버섯 왕국
2. 왕국 원생동물.
Bergey의 분류에 따르면, 원핵생물 왕국은 네 부분으로 나누어진다:
1. Gracilicutes - 벽이 얇고 그람 음성균입니다.
2. 퍼미쿠테스(Firmicutes) - 벽이 두껍고 그람 양성균입니다.
3. 테네리쿠테에는 세포벽이 없습니다(여기에는 마이코플라스마도 포함됩니다).
4. 멘도시쿠테스 - 고세균, 벽 결함, 펩티도글리칸 부족, 리보솜, 막 및 RNA의 구조적 특징.
12-16. 스피로헤타, 방선균, 마이코플라스마, 리케차, 클라미디아의 체계적인 위치 및 형태. 연구 방법.
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스피로헤타 |
방선균 |
마이코플라스마 |
리케차 |
클라므디아 |
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그램 소유권 |
그들은 세포벽이 없습니다. 그램- | ||||
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진단 방법 |
Romanovsky-Gimta에 따른 염색, Morozov에 따른 은도금 방법, 암시야 또는 위상차 현미경 사용 |
간단한 방법, 그람 염색, Ziehl-Neelson 염색 |
위상차 현미경 배양 및 혈청학적 방법 |
Zdrodovsky 방법에 따르면 Gram에 따르면 전자 현미경 |
Romanovsky-Giemsa에 따르면. |
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형태 |
얇은 나선형으로 주름진 나사산, 중심 축 주위로 구부러짐, 최대 50 µm |
실 모양의 꼬인 막대 모양 세포 |
작거나 큰 구형, 난형 또는 사상형 세포 |
구균체, 막대 모양 또는 사상 모양의 작은 다형성 박테리아 |
기본 구형체(인간 외부)와 망상체(세포 내) |
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구조적 조직의 특징 |
그녀의 전형적인 경찰, 논쟁의 여지가 없어 |
편모나 내생포자 캡슐이 없습니다. |
전형적인 CS가 없고, 포자를 형성하지 않으며, 편모가 없습니다. |
CS는 그람박테리아의 종류에 따라 만들어졌습니다. |
캡슐리스 |
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대표자 |
병원성 및 부생 식물; 트레포네마(8-12컬), 보렐리아(3-8) 컬), 렙토스피라(20-30 컬) |
대부분 부생식물이고, 병원성 속은 방선균류와 노카르디아속입니다. |
자연계에 널리 분포하는 병원성 및 비병원성 형태 | ||
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질병을 유발함 |
매독, 재귀열, 렙토스피라증 |
노카르디아증, 피부 균종 |
급성 호흡기 감염, 비정형 폐렴 및 |
리케차병, 발진티푸스 |
트라코마, 오르니토증. 서혜부 림프육아종증 |
6. 편모, 융모, 필리. 원핵생물의 이동 방법. 박테리아의 운동성을 결정하는 방법
편모는 얇고 길며 실 모양의 단백질 형태입니다. 단백질 라벨린에서. 수축성이 있습니다. 편모는 특성에 따라 배열되며 그 수는 다릅니다: 모노트리치(극부에 위치한 편모 1개), 로포트리치(한쪽 끝에 편모 다발), 무피트리치(1개 또는 세포의 반대쪽 끝에 다발), 페리트리치(위쪽) 전체 표면), atriches(고정). 이는 어린 작물에 일반적이며 나이가 들거나 영양이 부족하면 편모가 손실됩니다. 박테리아의 이동성은 미시적 및 거시적 방법으로 결정되었습니다. 현미경으로 뭉개지거나 매달린 방울의 얼룩이 준비됩니다. 거시적 - 주사로 반액체 한천에 접종. 편모는 기저체, 고리, 나선형 편모 필라멘트의 3가지 구성 요소로 구성됩니다. 기본 본체는 특수 링 시스템으로 구성됩니다. gr-박테리아에는 외부 L과 P, 내부 S와 M의 두 쌍이 있습니다. gr+ S와 M에서는 서로에 대한 회전의 결과로 편모가 회전합니다. 후크는 기저체와 편모의 단단한 필라멘트 사이의 유연한 연결 링크 역할을 하는 곡선형 단백질 실린더입니다. 기초 몸체는 중앙 막대와 고리로 구성된 복잡한 구조입니다. 원핵생물의 운동은 회전운동, 병진운동, 굴곡운동으로 이루어진다. 그들은 술을 마셨다. 플라스미드를 운반하는 박테리아는 단백질 성질의 실 모양 구조를 가지고 있습니다. 단백질 필린으로 구성됩니다. 이러한 융모의 합성은 플라스미드 유전자의 통제하에 있습니다. Pili는 접합 장치이며, 이들의 도움으로 기증자 세포와 수용자 세포 사이에 접촉이 확립됩니다. 필리에는 성적 유형과 일반 유형(fimbriae)의 두 가지 클래스가 있습니다. 성음주 - 1회당 1.2~5회 이상. 융모 (fimbriae). 그 수가 수천에 달할 수 있는 짧은 실의 도움으로 박테리아가 특정 표면에 부착됩니다. 많은 병원성 박테리아의 경우 섬유증은 병원성 요인입니다. 그들의 도움으로 박테리아는 민감한 조직에 부착되어 접착을 형성합니다. 적혈구의 응집을 유발합니다.
7.미생물을 염색하는 간단하고 복잡한 방법
실용적인 중요성. 준비물은 간단하고 복잡한 방법을 사용하여 염색됩니다. 간단한 방법. 착색에는 하나의 착색 용액을 사용하십시오. 하나의 염료 용액을 고정된 도말에 적용합니다: 메틸렌 블루는 4분, 젠티안 바이올렛은 2분, 마젠타는 1분입니다. 페인트를 물로 씻어내고 얼룩을 여과지로 건조시킵니다. 완성된 도말에 침지유 한 방울을 바르고 현미경으로 검사합니다. 간단한 염색을 통해 박테리아의 형태를 빠르게 익힐 수 있습니다. 복잡한 방법. 여러 가지 염료 및 시약 용액이 사용됩니다. 이를 통해 박테리아의 형태, 착색 특징 및 세포의 구조적 요소의 존재 여부를 확인할 수 있으며 이는 중요한 감별 진단 중요성을 갖습니다. 방법 중 하나는 그람염색(Gram 염색)으로 용담 바이올렛에 담근 여과지를 고정 제제에 2분간 적용합니다. 종이를 제거하고 루골 용액을 2분간 적용합니다. 물기를 빼고 알코올로 도말을 30초 동안 처리한 후 물로 세척하고 푹신으로 1분간 염색합니다. 염색 결과를 토대로 세포벽의 종류를 판별하였다. 포자염색법 : 멜러법 : 고정된 도말을 크롬산으로 2분간 에칭한 후 물로 세척하고 여과지로 건조시킨 후 여과지를 도말 위에 놓고 마젠타색을 칠한 후 제제를 가열하여 7분간 염색하고, 종이와 페인트를 물기를 빼내고 황산으로 5초간 처리한 후 물로 세척하고 메틸렌 블루로 4분간 염색한 다음 물로 세척하고 여과지로 건조합니다. 현미경 검사: 포자는 분홍색-빨간색이고 영양 세포는 파란색입니다. Zlatogorov의 방법은 크롬으로 처리하지 않고 동일합니다. Peshkov의 방법: 도말을 고정하고, 가열하면서 메틸렌 블루로 염색하고, 물로 씻어내고, 중성 적색 용액으로 10초 동안 염색하고, 물로 씻어내고, 여과지로 건조합니다. 포자는 파란색, CL은 빨간색입니다.
8. 실험실에서 호기성 미생물을 배양합니다. 호기성 미생물의 순수 배양물을 분리하는 방법
인공 사료에서 자란 미생물은 미생물 배양이며 사료에서 성장하는 것은 재배를 통해 이루어집니다. 배양에 필요한 조건은 연구 중인 박테리아 종이 속하는 그룹을 고려한 최적 온도, 적절한 영양 조건, 호기성(또는 혐기성)입니다. 온도 조절 장치는 최적의 온도를 일정하게 유지하는 데 사용됩니다. 실험실 온도 조절 장치는 외부가 비열전도성 재료(플라스틱)로 라이닝되어 있고 내부 벽이 금속으로 되어 있는 이중 벽으로 이루어진 캐비닛입니다. 두 개의 금속 벽 사이에는 전기로 가열되는 물(또는 공기)이 있습니다. 가열된 물에서 열은 내부 금속 벽을 통해 온도 조절 장치로 들어갑니다. 내부에는 시험관, 페트리 접시 등이 있는 랙이 놓이는 메쉬 선반이 있습니다. 일정한 온도온도 조절 장치를 사용하여 유지 - 온도가 특정 수준에 도달하면 장치가 자동으로 꺼집니다. 온도가 떨어지면 온도 조절기가 자동으로 다시 켜집니다. 온도 체계를 보장하는 것 외에도 미생물의 호흡 유형을 고려해야 합니다. 호기성 호흡 유형의 경우 추가 조건을 만들 필요가 없습니다. 혼합물에서 한 종류의 미생물을 분리하는 것은 순수한 배양균을 분리하는 것입니다. 파스퇴르가 제안한 첫 번째 방법 중 하나는 희석법이었습니다. 시험 물질은 액체 피트 매체에서 순차적으로 희석됩니다. MPB가 포함된 여러 개의 시험관을 채취하고 시험 물질을 첫 번째 시험관에 추가하고 혼합한 후 두 번째 시험관으로 옮깁니다. 파스퇴르는 마지막 시험관에서 한 종류의 미생물의 성장이 가능하다고 가정했습니다. 그러나 그것은 사실이 아닙니다. Koch의 방법 - 조밀한 배지가 사용됩니다 - 파스퇴르의 원리를 사용하여 시험 물질을 용융 및 냉각된 MPA가 포함된 4-5개의 시험관에 희석하고 시험관의 내용물을 조심스럽게 페트리 접시에 붓고 배지를 얇은 층에서는 컵이 닫혀 있고 A가 식으면 뒤집어집니다. 온도 조절 장치에 넣으세요. 미생물의 농도가 낮은 곳에서는 서로 분리된 콜로니가 성장합니다. 뒷면에는 원하는 콜로니를 표시하고 MPB, MPA에 접종하여 순수배양물을 성장시킵니다. Drigalski 방법은 판 파종 방법입니다. 4-5개의 페트리 접시를 가져가세요. 한천 배지를 플라스크에서 녹인 후 컵에 붓고 온도 조절 장치에 거꾸로 놓습니다. Drigalski 주걱이나 Pasteur 피펫을 사용하여 배지 표면에 한 방울을 균일하게 문지릅니다. 같은 주걱으로 두 번째 컵 표면 등을 문지릅니다. 온도 조절 장치에 거꾸로 놓으십시오. 원하는 작물이 MPA와 MPB에 뿌려집니다. 생물학적 방법 - 시험 물질을 민감한 살아있는 사람에게 주입합니다. 병원성 미생물이 존재하는 경우, 살아서 죽고, 개봉되어 배양됩니다. Shukevich의 방법 - 이동성 미생물이 응축액에서 표면 A로 이동하고, 재배된 배양물의 상단 가장자리에서 접종하여 순수한 배양물을 얻습니다. 화학적 방법- 피트 SR에 화학 성분이 첨가되어 고양이가 일부에게는 치명적인 영향을 미치고, 다른 일부에서는 성장이 지연되고, 또 다른 일부에서는 감염되지 않습니다.
9. 박테리아 세포의 화학적 조성
75-85% 물, 25-15% 건조 잔류물. 주요 역할은 네 번째 기본 요소에 속하며 고양이는 유기물이라고 불립니다. 산소 - 건조 잔류물의 30%, H - 6-8%, C-45-55%, N-8-15%. 세포 안의 물은 두 가지 상태가 될 수 있습니다. 자유수(free water)는 결정질 물질을 용해시키고 그 안에서 이온의 이동이 일어납니다. 결합된 물, 고양이는 단백질, 지방 및 탄수화물의 일부입니다. 세균 세포에서 단백질의 비율은 60-70%, 탄수화물 - 20%, 지질 -1-2%입니다. 증가된 지질 함량은 세포에 산-알코올-알칼리 저항성을 부여합니다. 단백질은 아미노산-복합체-단백질, 단순-단백질의 가수분해 중에 형성된 고분자 고분자 화합물입니다. 단백질 기능은 모든 세포막의 주요 구조 물질이며 운동 기능을 제공하고 막을 통해 물질을 운반하고 영양을 공급합니다. 탄수화물 - 다가 알코올(만니톨, 덜시트) 및 다당류(글리코겐). 그들은 수업에서 에너지 넘치는 역할을 합니다. 지질 – 지방 및 중성 지방, 세포질막의 인지질. 이는 단백질 합성을 위한 출발 성분으로 사용되는 예비 세포입니다. 최소 함량 – 3-10% 건조 잔류물. 마이크로 및 매크로 요소. 미생물 기능. 성자의 머리: 특이성과 열가소성. 미생물에서는 일련의 기능이 유전적으로 고정되어 유전됩니다. 기능의 차이: 1. 외구 - 세포가 외부 환경으로 방출되고 촉매가 분해됩니다. 복잡한 문제더 간단한 것들로 기판. 2. 내생식물 – 세포 자체에 국한되어 있으며 세포내 대사 과정에 참여합니다. 3. 구성적 - 이는 CL의 일정한 구성 요소이며 배지에서 촉매 작용을 하는 기질이 없는 경우에도 검출될 수 있습니다. 4. 적응성 - 세포는 환경에 적절한 기질이 나타날 때만 생산됩니다. 옥시리덕타제, 트랜스퍼라제, 가수분해효소, 리아제, 이성질화효소, 리가제 및 키나제가 있습니다. 기능의 존재는 특수 매체를 사용하여 감지할 수 있습니다.
막으로 분리된 다른 두 구획은 리보솜과 관련 단백질을 포함하는 피렐룰로스 또는 리보플라즈마와 리보솜이 없는 파라포플라스마입니다(Glockner, 2003). 3. 미생물의 일반적인 성질의 특징 미생물은 크기가 작아 육안으로 볼 수 없는 유기체이다. 이 기준은 그것들을 하나로 묶는 유일한 기준입니다. 나머지 세계는...
일치하는 기능의 수 기준. 미생물 분류에 대한 이러한 접근 방식은 매우 객관적이지만 이를 구현하려면 전자 컴퓨터를 사용한 광범위한 수학적 계산이 필요합니다. 상세한 연구 후에 미생물에 학명이 부여되며, 제안된 이항 명명법에 따라 두 개의 라틴어 단어로 표현되어야 합니다.
독립 영양 조건에서. 산화 가능한 기질에 따라 수소, 질산화, 황 박테리아 및 철 박테리아와 같은 화학석 독립 영양 생물 그룹이 구별됩니다. H2를 산화시키는 화학 독립 영양 미생물에는 또한 많은 메탄 형성 박테리아, 즉 아세테이트 형성, 황산염 및 황 환원 박테리아의 개별 대표자가 포함됩니다. 다양한 가능성이 드러난다…
또한 메소솜은 세포 대사 과정에 적극적으로 참여하지 않지만 구조적 기능을 수행하여 원핵 세포의 구획화, 즉 세포 내 내용물을 상대적으로 별도의 구획으로 공간적으로 구분하여 발생에 더 유리한 조건을 만드는 것으로 제안됩니다. 특정 시퀀스의...
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박테리아의 이동성을 결정하기 위해 "매달린 방울" 및 "분쇄된 방울" 방법이 사용됩니다.
매달아 떨어뜨리는 방식. 18~20시간 배양액 한 방울 또는 한천배양 응축액 한 방울을 커버슬립에 도포합니다. 가장자리에 바셀린을 살짝 바르는 홈(우물)이 있는 특수 유리 슬라이드를 사용하여 배양액 한 방울을 덮어 커버 유리가 슬라이드에 달라붙게 합니다. 커버 유리가 위로 향하도록 프렙을 뒤집고 방울이 웰 위에 "걸립니다"(그림 14).
약간 어두운 시야를 사용하여 건식 렌즈 시스템에서 프렙을 현미경으로 관찰합니다(다이어프램과 콘덴서를 낮춰 사용). 낮은 배율에서 방울의 가장자리를 찾은 다음 튜브를 들어 올려 중간 배율 렌즈(40...60)를 작동 상태로 조심스럽게 놓습니다.
눈의 제어하에(측면에서 볼 때) 대물렌즈의 정면 렌즈가 커버슬립과 접촉할 때까지 튜브가 낮아집니다.
유리. 그런 다음 접안렌즈를 통해 조심스럽게 들어 올리십시오.
거시적 나사로 튜브를 조이고 시야에서 찾으십시오.
한 방울. 다음으로 마이크로미터 나사를 사용하여 미생물이 최적으로 보일 때까지 현미경을 조정합니다. 쌀. 14. 매달린 낙하 준비.
"분쇄 드롭" 방법. 매일 세균 배양액 한 방울을 일반 유리 슬라이드에 바르고 슬라이드 사이에 기포가 생기지 않고 배양액 방울이 커버 슬립의 가장자리를 넘어 퍼지지 않도록 커버 슬립으로 조심스럽게 덮습니다. 중배율 렌즈를 조심스럽게 낮추고 현미경을 검사합니다.
두 경우 모두, 시야의 회색 배경에 대해 미생물 세포의 움직임이 명확하게 보입니다.
염료의 제조 및 도말 제제의 착색. 미생물의 계대배양 방법.
살아있는 상태와 무생물 상태의 미생물을 현미경으로 관찰합니다. 미생물의 형태학적 특성과 착색 특성을 연구하기 위해 다양한 아닐린 염료를 사용하여 특수 착색된 제제를 제조합니다.
그림 물감그리고 착색 솔루션.다음 아닐린 염료는 미생물학 실습에서 가장 자주 사용됩니다. 마젠타색(기본), 메틸 레드, 중성 빨간색 - 용액에서는 빨간색입니다. 카볼릭 크리스탈 바이올렛, 메틸 바이올렛, 용담 바이올렛, 기성 액체 페인트 Giemsa (azur-eosin) 바이올렛; 메틸렌 블루, 다이아몬드, 말라카이트 그린.
페인트의 수성 또는 알코올성 용액은 건조 결정질 또는 분말 염료로 제조됩니다. 후자는 일반적으로 어두운 곳(어두운 유리 제품, 암실)에 잘 보존되므로 향후 사용을 위해 준비됩니다. 미생물 세포에 대한 염료 용액의 효과를 높이기 위해 염료 용액 (페놀, 가성 칼륨)에 첨가되는 다양한 소독제를 사용하거나 염색 전 제제를 처리하는 데 사용됩니다 (염산, 황산 또는 크롬산의 약한 용액 ). 또한 에칭을 위해 페인트를 부은 준비물을 가열하거나 예열된 페인트 용액으로 채웁니다. 용액에 불안정하고 오랫동안 지속되지 않는 도료는 사용 직전에만 1~2% 용액 형태로 제조됩니다.
알코올-물 용액. 카르볼릭 푹신(Tsil fuchsin).염기성 푹신 결정은 96% 에틸 알코올에 미리 용해되어 있습니다. 먼저 포화 알코올 용액(페인트 5~10g당 알코올 100ml)을 준비합니다. 더 좋고 더 빠른 용해를 위해 먼저 페인트 결정을 도자기 모르타르에 넣고 글리세린 몇 방울을 첨가한 소량의 알코올과 함께 분쇄합니다. 순수한 알코올 용액은 페인팅에 적합하지 않으므로 알코올-물 용액이 준비됩니다. 5% 페놀(매염제)이 포함된 증류수 100ml를 푹신의 포화 알코올 용액 10~20ml에 첨가합니다. 생성된 푹신 용액을 여과지를 통해 여과합니다. 어떤 경우에는 사용하기 전에 Ziehl fuchsin을 증류수(1:10)로 다시 희석하여 작동 용액을 얻습니다(Pfeiffer fuchsin).
카볼릭 크리스탈 바이올렛, 메티프바이올렛, 용담바이올렛.용액의 처음 두 염료는 매우 빠르게 침전되며, 염색되면 현미경 사진이 왜곡될 수 있습니다. 더 자주 그들은 덱스트린을 첨가하여 메틸과 크리스탈 바이올렛을 혼합하여 얻은 용담 바이올렛을 사용합니다. 좀 더 균일한 색상을 보여줍니다. 알코올-물 용액을 제조하려면 건조 젠티안 바이올렛 1g을 알코올 10ml에 녹이고 글리세린 및 페놀 결정(2%)과 함께 막자사발에서 분쇄한 다음 증류수를 첨가합니다. 용액을 보관할 때 침전물의 형성을 방지하기 위해 여과지 시트에 포화 용액을 함침시킵니다. 알코올 용액페인트를 칠하고 공기 중에서 건조시킨 다음 작은 조각이나 정사각형으로 자르고 땅에 마개가 있는 어두운 병에 보관하십시오.
준비물을 색칠할 때 말린 용담 바이올렛 조각을 그 위에 놓고 그 위에 물 몇 방울을 붓고 2~3분 동안 그대로 둡니다.
메틸렌블루 용액(레플러의 알칼리성 청색). 용액을 준비하려면 페인트 3g을 96 % 알코올 100ml에 장기간 (3 ~ 4 개월) 주입 한 다음 포화 용액 30ml를 1ml가 들어있는 증류수 100ml에 희석합니다! 수산화칼륨(매염제)의 % 용액. 거르는.
수성 솔루션. 2% 사프라닌:건조 염료 2g을 뜨거운 증류수 100ml에 붓고 종이 필터로 여과 한 후 즉시 새로운 염색 용액을 사용합니다.
말라카이트 그린 1% 용액:결정성 도료 1g을 뜨거운 증류수 100ml에 녹인 후 여과하고 식힌 후 착색에 사용한다.
기성액상페인트 아주레오신(김사페인트)박테리아 제제를 염색하는 특별한 방법에 사용됩니다. 사용하기 전에 증류수(1:10)로 희석해야 하지만 즉시 침전물이 형성됩니다. 후자가 준비에 영향을 미치는 것을 방지하기 위해 Romanovsky의 권장 사항에 따라 다음과 같이 염색이 수행됩니다. 유리 막대 또는 머리가 부러진 성냥을 페트리 접시 바닥에 놓고 준비물을 얼룩지게 놓고 그 위에 놓습니다. 페인트 용액을 준비물에 붓습니다 (Romanovsky-Giemsa 방법).
환경의 박테리아 구성에 효과적으로 영향을 미치기 위해서는 박테리아의 질적, 양적 함량에 대한 신뢰할 수 있는 정보가 필요합니다. 박테리아를 식별하는 방법에는 여러 가지가 있으며, 샘플을 검사하는 방법의 선택은 얻고자 하는 결과에 따라 달라집니다. 유산균 판별법은 리스테리아 모노사이토게네스(Listeria monocytogenes) 동정법과 다르며, 효소 활성 판별은 생화학적 성질 판별과 다르게 수행됩니다.
얻은 결과를 기반으로 한 결정 방법은 두 가지 큰 그룹으로 나눌 수 있습니다.
- 미생물 수 결정;
- 질적 연구.
샘플의 박테리아 조성 분석 결과는 CFU(콜로니 형성 단위)로 표시되는 총 미생물 수로 표시됩니다.
미생물 수 분석은 기능에 따라 다음을 결정할 수 있습니다.
- 시료에 포함된 모든 미생물의 수;
- 살아있는 미생물만.
결과를 얻는 방법에 따라 미생물 수를 결정하는 방법은 다음과 같이 나뉩니다.
- 직선(현미경);
- 간접적.
차례로 간접 방법은 다음과 같이 사용되는 기준에 따라 구분됩니다.
- 광학 연구 방법(분광광도법, 비탁법) - 측정된 매개변수는 미생물 수에 따라 다릅니다.
- 도금은 형성된 콜로니를 측정하는 방법입니다.
결정 방법 총 수박테리아는 샘플의 역가 값을 기준으로 합니다.
역가 기술
샘플 희석을 제한하는 방법(역가법)을 사용하면 미생물 그룹의 정량적 값을 높은 정확도로 결정할 수 있습니다.
이 기술의 핵심은 시험 시료를 일정한 방식으로 희석하여 미생물 특이적 배지에 접종하는 것입니다. 이는 성장에 유리한 조건을 만듭니다. 시간이 지남에 따라 특정 그룹의 박테리아가 검출되는 최대 희석도를 결정하기 위해 샘플을 검사합니다. 결론은 영양 기질의 특정 변화를 기반으로 도출되었습니다.
미생물의 개별 특성을 고려한 유사한 기술이 대장균 미생물 및 관련 종의 검출에서 잘 입증되었습니다.
직접 계산
이 방법은 토양 및 물 샘플을 연구하는 데 편리합니다. 직접 계수는 이러한 목적으로 설계된 계수 챔버, 막 필터 또는 고정 도말에서 수행됩니다. 이 방법은 복잡한 장비가 필요하지 않으며 시간이 짧고 비용이 최소화됩니다.
이 방법의 한계는 샘플에 높은 농도의 미생물이 필요하다는 것입니다.
시료 현탁액에 의한 광산란 측정을 기반으로 박테리아 수를 광학적으로 측정하는 방법입니다. 이 방법을 사용하면 샘플의 세포 수를 결정할 수 있으므로 미생물학 연구에서 이 방법이 널리 사용됩니다.
비탁법
생존 가능한 미생물 계산
이 기술은 한천 배지에 현탁액 형태로 특정 수의 박테리아를 접종하는 것에 기반을 두고 있습니다. 그 후, 각각이 생존 가능한 박테리아의 자손이라는 점을 염두에 두고 형성된 콜로니의 수를 계산합니다.
샘플 접종 방법에는 두 가지 유형이 있습니다.
- 테스트 샘플을 한천 배지에 첨가하고 혼합합니다.
- 샘플은 한천의 표면층에 뿌려집니다.
박테리아 식별에 중요한 요소인 운동성
박테리아 식별의 중요한 요소는 편모에 의해 제공되는 운동성입니다. 운동성을 제공하는 편모의 수와 위치가 다를 수 있으므로 편모가 있는 모든 미생물은 쉽게 식별할 수 있도록 다음과 같이 나뉩니다.
- 단모체 - 극에 하나의 편모;
- lophotrichs - 극 중 하나에 위치한 편모 묶음;
- 양수성 - 편모 또는 다발이 양쪽 극에 위치합니다.
- Peritichi - 편모는 세포 주변을 따라 위치합니다.
박테리아 이동성의 측정은 하루가 넘지 않은 배양액에서 수행됩니다. 오래된 문화권에서는 움직이는 능력이 상실되었습니다.
정성적인 박테리아 구성의 결정
박테리아의 질적 구성을 결정하는 것은 여러 요인에 기초합니다.
미생물의 생물학적, 화학적 특성
미생물의 생화학적 특성에 대한 연구는 박테리아의 질적 구성을 결정하는 데 도움이 됩니다.
미생물의 식별은 생화학적 과정에 대한 지식을 통해 촉진됩니다. 박테리아의 양과 질을 결정하는 방법은 미생물의 단백질 분해 및 당분해 특성과 독소 및 색소 형성을 기반으로 합니다.
미생물 효소
박테리아의 생명에 영향을 미치는 요소 중 하나는 효소 활성입니다. 효소의 구성과 특성은 미생물의 게놈에 의해 조절되며 미생물을 식별하는 안정적인 기준입니다. 따라서 단백질 분해, 당분해 및 기타 효소의 검출은 미생물 식별에 매우 중요합니다.
예를 들어, 미생물의 단백질 분해 활성에 대한 기준은 박테리아가 단백질을 심층 분해 산물(황화수소 및 인돌)로 분해하는 능력입니다. 실용적으로 매우 중요한 미생물 수를 결정하는 방법은 이러한 효소 활성 결과를 기반으로 합니다.
안료 형성 특성
박테리아의 또 다른 지속적인 유전적 특성은 색소 형성입니다. 이 특성은 박테리아 세포를 자외선에 노출되지 않도록 보호하기 위한 것입니다.
대부분의 병원성 미생물에는 이러한 보호 특성이 없습니다. 색소 형성은 일반적이지 않습니다.
우유 미생물 연구
박테리아의 정의는 식품 산업과 같은 실제적인 인간 활동에서 중요합니다. 따라서 우유의 박테리아 오염은 생산 위생 상태의 주요 지표입니다. 우유에 함유된 미생물의 한계치가 초과되면 제품의 품질이 저하됩니다.
1987년부터 EEC 국가들은 우유의 박테리아 오염 정도에 대한 통일된 표준을 채택하여 제품을 세 가지 범주로 분류했습니다.
- A – 20,000/ml;
- B - 10만/ml;
- C – 100,000/ml 이상.
이 경우 숫자는 우유 1ml에 가능한 최대 미생물 수(오염)를 나타냅니다.
우유의 세균 오염은 제품 수령 및 초기 처리의 위생 조건에 직접적으로 좌우됩니다. 따라서 우유 정화를 위해 재사용 가능한 필터를 사용하면 추가적인 박테리아 오염이 발생할 수 있습니다.
우유에 체세포가 존재하는지 여부는 중요한 품질 기준입니다. 이 세포는 동물 바이오매스의 입자입니다. 그들은 유방에서 형성되며 신체의 노화와 재생의 자연적인 과정을 반영합니다.
동물이 부상을 입거나 위장 질환 또는 기타 병리가 있을 때 우유의 체세포 수가 증가하여 우유의 세균 오염 비율이 증가합니다.
유산균의 측정
젖산 미생물은 길항 작용과 단백질 분해 활성으로 인해 식품 산업에서 매우 중요합니다.
예를 들어, 다양한 유형의 치즈의 플라스틱 일관성과 뚜렷한 맛은 스타터 배양에서 젖산 미생물의 단백질 분해 활성과 관련이 있습니다. 이 분야에서 젖산균의 활동에 대한 연구는 매우 중요하지만, 지금까지 단백질 분해 활성을 기반으로 사워도우에 들어 있는 젖산균의 균주를 결정하는 기준을 만드는 것은 불가능했습니다.
유산균의 길항활성은 식품산업뿐만 아니라 의약, 수의학, 농업 등에서도 활용되고 있다.
특정 미생물에 대한 길항제로서 젖산균을 사용하는 예:
- 치즈 생산 - 기름 미생물 및 대장균에 대한 길항제;
- 제빵 생산 - 빵의 "감자 질병"의 원인균인 포자균에 대한 길항제;
- 젖산 제품은 위장 감염의 발병을 유발하는 박테리아에 대한 길항제입니다.
스타터의 유산균 수를 계산해야 할 경우 분필을 추가하여 한천과 우유에 미생물을 파종하는 방법을 사용하십시오. 생성된 젖산은 분필을 용해시키고 젖산균 군집 주위에 밝은 영역이 나타납니다.
젖산 연쇄구균의 계수에는 이를 우유에 접종하여 한계희석법을 사용한다. 유산균의 호열성에 따라 최적의 열 파종 방식이 선택됩니다. 응고된 우유가 포함된 샘플을 사용하여 현미경 슬라이드를 준비합니다. 그 후, 젖산봉을 함유한 최소 희석액이 검출됩니다.
공기 미생물 제어
대기 환경은 박테리아의 생존에 좋지 않지만 대부분의 미생물은 공기 중으로 방출되면 일시적으로 활동과 특성을 유지할 수 있습니다. 그 중에는 홍역, 성홍열, 백일해, 천연두, 결핵, 폐렴 흑사병 및 기타 감염의 원인 물질과 같은 병원성 박테리아가 있습니다. 호흡기공기 중의 물방울에 의해 전달됩니다.
대기 환경의 미생물학적 제어는 공기의 일반적인 세균 오염을 평가하고 예방 방법전염병의 병원체 수를 줄입니다.
밀폐된 공간의 세균 오염 정도를 연구하는 대상은 병원, 진료소, 어린이집, 사람들이 끊임없이 모이는 장소(영화관, 체육관 등)입니다. 실내 공기의 박테리아 오염 정도 결정은 다음 조치를 포함하여 입증된 방법을 사용하여 수행됩니다.
- 샘플 수집;
- 운송 및 샘플 준비;
- 박테리아 배양;
- 식별을 통한 미생물 판별.
높은 수준의 박테리아 오염이 감지되면 박테리아 수를 줄이기 위해 다양한 방법이 사용됩니다.
- 화학 - 이산화질소, 오존 또는 젖산 현탁액으로 방을 처리합니다.
- 기계적 – 강제 공기 여과;
- 물리적 - 자외선 조사.
물의 박테리아 구성 연구
수질 분석은 다음과 같은 미생물 그룹의 존재 여부에 대해 수행됩니다.
- 대장균군(coliform microbes) – 대변 오염(파종)의 지표로 사용되는 대장균(Escherichia coli) 그룹의 미생물.
- 클로스트리디아는 소독에 대한 저항성이 매우 높은 미생물입니다. 참조 지표(랜드마크) - 샘플에 클로스트리듐이 없으면 다른 병원성 미생물이 없습니다.
- 바이러스;
- 지아르디아.
대장균군은 포유류와 조류의 장에서 발견되는 그람 음성 대장균군 박테리아입니다. 그들은 배설물과 함께 물에 들어가 몇 주 동안 생존할 수 있지만 번식 능력을 잃습니다.
물 샘플에 대장균군 미생물이 존재한다는 것은 폐수가 존재할 가능성이 높다는 것을 의미합니다. 대장균군 박테리아의 독성(병원성) 균주의 존재는 질병의 위험을 나타내는 지표입니다.
대장균군 미생물에는 높은 온도(45°C)에서 생존할 수 있는 능력이 있는 내열성 대장균군 미생물 그룹이 포함됩니다. 내열성 대장균군 박테리아는 최근 분변 오염의 지표이며 분석적으로 쉽게 검출됩니다.
SanPiN에 따르면, 대장균군 박테리아는 물 공급 시스템에 존재할 수 없으며, 대장균군 미생물의 존재는 처리 품질이 좋지 않거나 2차 분변 오염을 의미합니다. 전체의 5% 이하의 양으로 대장균군 미생물이 존재하는 것이 표준으로 간주됩니다. 분변 폐수 처리의 유효성 기준은 쉽게 식별할 수 있는 내열성 대장균군입니다.
리스테리아증의 원인균 규명
리스테리아 모노사이토제네스(Listeria monocytogenes)라는 세균이 리스테리아증의 원인균이다. 감염성 질병사람과 동물.
리스테리아 모노사이토게네스
리스테리아증의 원인균은 운동성이 높고 포자를 형성하지 않는 그람 양성 대장균 Listeria monocytogenes입니다. 사람의 경우 Listeria monocytogenes 감염은 급성 패혈증으로 발생하며 중추신경계, 림프계, 편도선, 비장 및 간에 영향을 미칩니다. 리스테리아 모노사이토제네스 감염은 인간에게 급성 및 만성 형태로 발생할 수 있습니다.
Listeria monocytogenes의 통계적 위험 그룹:
- 어르신;
- 임산부;
- 면역 체계가 약화된 사람, HIV 감염자 및 암 환자;
- 알코올 중독자와 마약 중독자.
Listeria monocytogenes 감염은 PCR(중합효소연쇄반응)에 의해 결정됩니다. Listeria monocytogenes DNA는 혈장에서 검출됩니다. 리스테리아증의 존재를 확인하는 것은 Listeria monocytogenes의 특정 DNA 영역을 식별하는 것입니다. Listeria monocytogenes DNA 측정의 특이성은 100%입니다. 이 방법은 매우 민감합니다.
박테리아와 항생제의 상호 작용
항생제에 대한 박테리아의 민감도를 결정하는 것은 전염병 예방 및 치료에 있어 약물의 복용량을 계산하는 데 있어 실질적으로 매우 중요합니다.
다양한 항생제에 대한 미생물의 민감도를 결정하기 위해 두 가지 주요 방법이 사용됩니다.
- 디스크를 사용하여 항생제에 대한 민감도 결정;
- 연속 희석을 통해 항생제에 대한 미생물의 민감성을 연구합니다.
디스크를 이용한 방식
항생제에 대한 민감도를 결정하기 위해 연구 대상 박테리아를 영양 배양물에 접종합니다. 알려진 복용량의 다양한 항생제가 포함된 디스크가 표면에 배치됩니다.
시료를 하루 동안 최적 온도(37°C)로 유지한 후 다양한 디스크 주변의 환형 무균 구역의 직경을 비교하여 다양한 항생제에 대한 박테리아의 민감도 및 농도에 대한 결론을 도출합니다. .
재현 가능한 결과를 얻으려면 표준 디스크와 배양 배지를 사용해야 하며 참조 균주를 대조로 사용해야 합니다. 디스크 기술은 신뢰할 수 있는 결과를 얻는 것을 허용하지 않으며 약하게 확산되는 항생제(리스토마이신 또는 폴리믹신)에도 매우 중요합니다.
연속육종
연속 희석에 의한 항생제에 대한 미생물의 민감도를 통해 치료 효과가 있는 약물의 최소 농도를 확인할 수 있습니다. 미생물의 민감도는 다음과 같이 결정됩니다.
- 민감한 균주 - 박테리아의 중요한 활동은 혈액 내 항생제의 일반적인 복용량에 의해 억제됩니다.
- 중간 정도의 저항성 균주 - 박테리아를 억제하려면 다음을 사용해야 합니다. 최대 복용량항생제;
- 저항성 박테리아 - 항생제의 최대 농도, 즉 감수성이 부족하더라도 박테리아의 필수 활동이 억제되지 않습니다.
박테리오파지 민감도 결정
박테리오파지는 박테리아의 천적입니다. 박테리오파지와 박테리아의 상호작용의 성질은 다음과 같이 기술된다:
- 독성이 있어 미생물 세포의 용해(죽음)를 유발합니다.
- 중간 – 박테리아가 비감염성 파지(프로파지) 형태로 전환됩니다.
박테리오파지는 연쇄상 구균 파지, 포도상 구균 파지 등과 같은 이름에 반영된 특정 미생물 그룹에 특유합니다. 단위 부피당 박테리오파지의 수를 측정하는 방법으로는 한천층법이 있다. 수행이 간단하고 정확도가 충분합니다.
따라서 많은 수의미생물을 결정하는 방법. 최적의 선택은 주어진 선택 기준에 따라 다릅니다.
나는 수의사로 일하고 있습니다. 나는 점점 쫓겨나고 있어요 볼룸 댄스, 스포츠 및 요가. 나는 개인적인 발전과 영적인 실천을 익히는 것을 최우선으로 생각합니다. 좋아하는 주제: 수의학, 생물학, 건설, 수리, 여행. 금기: 법률, 정치, IT 기술 및 컴퓨터 게임.
수업의 목적. 포자 형성, 캡슐 형성 박테리아를 염색하고 박테리아의 운동성을 결정하는 방법을 알아보세요.
재료 및 장비. 탄저병 백신 균주가 포함된 박테리아 현탁액, 클로스트리디아, 캡슐 형성 박테리아가 포함된 기성 제제, Escherichia의 이동 배지 배양 18시간 성장, 슬라이드 및 커버 유리, 포스터, 2% 사프라닌 용액, 말라카이트 그린 수용액, Ziehl carbolic 푹신.
지침. 각 학생은 미생물 현탁액에서 도말을 준비하고 Trujillo, Olt 방법, 현미경 및 스케치에 따라 염색합니다. "분쇄" 및 "매달기" 낙하 방법을 사용하여 미생물의 이동성을 연구하기 위한 준비를 준비합니다.
포자 착색. 미생물에 불리한 조건(영양 배지 부족, 건조, 불리한 온도 등)에서 일부 미생물의 세포질에 포자가 형성됩니다. 그들은 영양 세포 내부에서 형성되며 내생 포자입니다. 직경이 미생물 세포의 너비를 초과하지 않는 둥근 포자를 형성하는 막대 모양의 그람 양성 미생물은 Bacillus 속에 속하며 간균이라고합니다. 클로스트리디움(Clostridium) 속의 미생물은 직경이 미생물 세포의 너비를 초과하는 포자를 갖고 있으며 이를 클로스트리듐이라고 합니다. 모양은 타원형이고 둥글다(그림 5).
포자는 노출에 저항력이 있습니다. 고온, 화학 물질, 건조, 오랫동안 토양에 남아 있는데 이는 특수한 구조와 화학적 구성 요소, 특히 그 껍질. 따라서 포자는 염료에 내성이 있습니다.
포자를 염색하는 모든 방법은 염색이 어려운 포자 껍질을 통해 염료가 침투하는 것을 보장하는 데 기반을 두고 있습니다. 따라서 매염제가 사용됩니다. 냉각 후 껍질은 다시 조밀해지며 추가 염료가 통과하는 것을 허용하지 않습니다.
Trujillo 방법을 이용한 포자 염색 기술. 고정된 도말 위에 작은 여과지 조각을 놓고 말라카이트 그린 수용액을 도포합니다.
쌀. 5. 각종 미생물의 포자
증기가 나타날 때까지 버너 불꽃에 프렙을 가열하고 3분간 방치한 후 물로 헹구고 0.25%로 도장을 마무리합니다. 수용액기본 푹신 1분. 물로 씻고 말리세요. 미세 사진: 포자는 녹색이고 영양 세포는 빨간색입니다.
캡슐 착색. 미생물 세포의 몸체는 느슨한 점액층으로 덮여 있습니다. 일부 유형의 미생물에서는 이 층이 매우 강하게 발달하여 캡슐이라고 불립니다. 캡슐은 고분자 다당류인 뮤신 유사 물질로 껍질 바깥층의 유도체입니다. 캡슐의 존재는 특정 감염(탄저병, 폐렴구균성 폐렴 등)의 병원체를 식별하고 감별하는 데 중요한 진단 신호입니다(그림 6). 병원성 미생물은 감염된 신체에 캡슐을 형성합니다. 독성인자로서 식균작용과 혈청의 살균효과로부터 세균세포를 보호합니다. 캡슐 물질은 잘 얼룩지지 않습니다. 따라서 캡슐을 검출하기 위한 약물을 준비할 때 다음 규칙을 따릅니다.
a) 캡슐이 빠르게 용해되므로 도말은 새로운 물질로 준비됩니다.
b) 도말을 화학적으로 고정하고 착색을 위해 변색성 페인트가 사용됩니다. 즉, 사용 시 세포질은 한 가지 색상으로 칠해지고 캡슐은 다른 색상으로 칠해집니다.
c) 얼룩은 물로 가볍게 그리고 짧게 씻어야 합니다.
Olt 방법을 이용한 캡슐 착색 기술. 신선하고 뜨거운 2% 사프라닌 용액을 고정된 도말표본에 바르고 5-7분 동안 염색합니다. 물로 빨리 헹구고 말리세요. 세포체는 붉은 벽돌로 칠해져 있고 캡슐은 노란색-주황색입니다. 박테리아 운동성의 결정.
박테리아 이동성은 종의 중요한 특성이며 진단 연구에 사용됩니다. 결과는 미생물을 식별할 때 고려됩니다. 이동성 종에서 독립적인 병진(및 회전) 운동 능력은 편모- 특별한 얇은 실 모양의 구조물.
그림 6. 박테리아 내 캡슐
a - 탄저균; b - 쌍구균
편모는 길이가 다릅니다.
직경이 너무 작아서 광학현미경으로 볼 수 없습니다(0.2미크론 미만). 박테리아 그룹에 따라 편모의 수와 위치가 다릅니다. 편모는 염료를 잘 받아들이지 않습니다. 복잡한 염색 방법은 편모의 실제 모습을 왜곡하므로 실험실에서는 편모를 염색하지 않지만 박테리아는 살아있는 상태에서 검사합니다. 편모의 위치와 수에 따라 미생물이 구분됩니다(그림 7).
ㅏ) 단일 리치- 극 중 하나에 하나의 편모가 있고 활성 번역 운동을 하는 미생물(슈도모나스)
쌀. 7. 박테리아의 편모 배열 유형
비) 로프트 리치- 한쪽 극에 편모 다발이 있는 미생물(리스테리아)
V) 양서류- 미생물 세포의 양쪽 극에 편모를 갖는 미생물;
G) 위험한- 편모가 세포의 전체 표면에 위치하는 미생물(대장균).
이동성은 있지만 편모가 없는 유형의 미생물(스피로헤타, 렙토스피라)이 있습니다. 이들의 움직임은 미생물 세포의 원섬유 운동 장치의 충동적인 수축으로 인해 발생합니다.
박테리아의 이동성을 결정하려면 오래된 배양물은 이동 능력을 잃기 때문에 하루가 지나지 않은 배양물을 사용해야 합니다.
행잉 드롭(hanging drop) 방법을 이용한 박테리아 운동성 측정.박테리아의 어린(18-20시간) 배양액 한 방울을 박테리아 루프를 사용하여 커버 유리에 적용합니다. 배양액 한 방울을 오목한 부분(우물)이 있는 특수 유리 슬라이드로 덮어 방울이 있는 덮개 유리가 웰 중앙에 있고 슬라이드에 달라붙도록 합니다(우물 가장자리에는 먼저 바셀린을 살짝 바릅니다). . 약물을 거꾸로 뒤집으면 방울이 구멍 위에 "걸립니다"(그림 8). 표본은 어두운 시야에서 처음에는 낮은 배율로, 그 다음에는 중간 또는 높은 배율로 현미경으로 검사됩니다. 밝은 배경에서 미생물은 짙은 회색입니다. Shukevich의 방법.이를 위해 미생물 현탁액 한 방울을 시험관 내 경사진 조밀 영양 배지의 응축물에 적용합니다. 응축수에서 이동하는 이동성 미생물은 배지 표면에서 자랍니다. 비운동성 종은 배지의 응축액에서만 번식합니다(한천 표면으로 "들어가지 않고").
"분쇄 드롭" 방법.박테리아 현탁액 한 방울을 일반 유리 슬라이드에 바르고 커버슬립으로 조심스럽게 덮고 손가락으로 가볍게 누릅니다. 현미경 검사는 교수형 드롭 방식과 동일한 방식으로 수행됩니다.
반액체 한천에 주입하여 파종하는 방법.이를 위해 세균학적 루프를 사용하여 반액체 영양 배지를 시험관 바닥에 주입하여 연구 중인 배양균을 접종합니다. 이동배양은 영양배지 전체에 걸쳐 성장하여 균일한 탁도를 형성하고, 정지배양은 막대 형태의 찌름을 따라서만 성장하여 배지의 미접종 부위의 투명성을 유지한다.
LESSON 5. 실험실 유리 제품 및 준비. 영양 매체. 배양 배지를 준비하고 멸균하는 방법. 실험실 유리 제품을 멸균하는 방법.
수업의 목적.요리를 준비하십시오. 영양 배지를 준비합니다. 매체의 pH를 결정합니다. 배양 배지 및 실험실 유리 제품을 멸균하는 방법을 숙지하십시오.
장비 및 재료.랙, 시험관, 미생물학적 루프, 피펫, 페트리 접시 , 종이. 오토클레이브, 건조 캐비닛. 미디어 및 화학 시약 세트입니다. pH 측정기.